Dans le domaine de la santé, le diagnostic constitue l’une des pierres angulaires des décisions médicales, des politiques de santé publique et de la prévention des épidémies. Comme 70% des prises de décision médicale reposent sur le résultats d’un test de diagnostic in vitro, la fiabilité des examens de biologie médicales représente un enjeu majeur de santé publique.
Un moyen privilégié pour répondre à ce besoin de fiabilité est d’établir la traçabilité métrologique des résultats de mesure aux unités du système international (SI), notamment par le biais de méthodes de référence et de matériaux de référence. Actuellement, force est hélas de constater que, contrairement aux autres domaines de la mesure, les résultats des examens de biologie médicale basés sur un test de diagnostic in vitro ne sont pas toujours traçables à des références reconnues internationalement. Or, le règlement 2017/746 de l’UE relatif aux dispositifs médicaux de diagnostic in vitro exige que la traçabilité des valeurs associées aux matériaux d’étalonnage et de contrôle de la qualité aux méthodes de référence et aux matériaux de référence certifiés disponibles.
Depuis plus de 15 ans, le département « Bioanalyses » développe des méthodes de référence par spectrométrie de masse et des matériaux de référence certifiés pour des biomarqueurs de pathologie très variées avec l’objectif:
d’assurer la traçabilité métrologique des résultats aux unités SI et améliorer la comparabilité des résultats fournis par les différentes méthodes de mesure utilisées en routine dans les laboratoires de biologie médicale;
d’évaluer la justesse et la comparabilité des résultats fournis par les méthodes utilisées en routine dans les laboratoires de biologie médicale
Le LNE, acteur fondamental dans la fiabilité du diagnostic de pathologies
Le LNE répond au besoin de différents acteurs impliqués dans la santé du citoyen : les patients, les médecins et cliniciens, les biologistes, les fabricants de diagnostic in vitro, les pouvoirs publics.
Maladies cardiovasculaires : une nécessité de disposer de biomarqueurs plus fiables
Depuis 2011 le LNE a développé des compétences dans les mesures de biomarqueurs liées au maladies cardiovasculaire. Ainsi le laboratoire est aujourd’hui reconnu laboratoire de référence pour le dosage du cholestérol total, du cholestérol-LDL et du cholestérol-LDL par spectrométrie de masse. Par ailleurs le laboratoire est accrédité par le COFRAC selon les référentiels ISO 15195 et ISO 17025 pour ces biomarqueurs ainsi que pour les triglycérides. Ces méthodes sont utilisées pour assigner des valeurs cibles à des Matériaux de Référence Certifiés, à des étalons industriels et à des échantillons de contrôle de qualité. Le laboratoire est membre du CRMLN (Cholesterol Reference Method Laboratory Network).
Par la suite, le laboratoire a complété son expertise en développant des activités relatives à l’analyse avancée de lipoprotéines dans le cadre du projet Européen BioSITrace. Ces travaux se sont poursuivis avec l’implication du département Bioanalyses dans le groupe de travail IFCC sur la standardisation des apolipoprotéines et le projet Européen CardioMet. Dans le cadre de ces projets le laboratoire contribue au développement d’une nouvelle chaine de traçabilité pour le dosage simultané d’un panel de 7 apolipoprotéines (apoA-I, B, C-I, C-II , C-III, E et apo (a)).
Enfin, le laboratoire travaille activement sur l’estimation du risque résiduel non diagnostiqué par les outils conventionnels. Ces travaux ont fait l’objet d’un article publié dans The Lancet, une des plus prestigieuses revues médicales au monde. Cette étude, menée aux côtés de chercheurs australiens et suédois, a démontré qu’environ 15 % des patients victimes d’un infarctus aigu du myocarde ne présentaient aucun facteur de risque. Ces résultats soulignent le besoin de disposer de biomarqueurs permettant d’identifier de manière plus fiable les patients présentant le risque le plus élevé de développer des maladies cardio-vasculaires avant la survenue de celles-ci.
LNE, centre nerveux de la prévention des maladies neurodégénératives
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Le projet Européen NEuroBioStand a pour ambition de développer des méthodes de référence pour le dosage de pTau, NfL et GFAP dans le sang
Depuis plus de 10 ans, le laboratoire travaille sur le développement de méthodes de référence pour le dosage de biomarqueurs de maladies neuro-dégénératives et en particulier la maladie d'Alzheimer. A travers les projets Européens NeuroMet et NeuroMet 2, le laboratoire a développé une expertise reconnue sur l’analyse de la protéine Tau par spectrométrie de masse. La protéine tau totale (T-tau) est couramment mesurée dans le liquide céphalorachidien (LCR) comme biomarqueur diagnostique de l’Alzheimer et est utilisée pour la stratification des patients. Sa concentration est corrélée à la progression de la maladie, bien qu'elle soit désormais considérée comme un biomarqueur moins spécifique que la protéine tau phosphorylée (P-tau), permettant de mieux définir le degré de la neurodégénérescence et du déclin cognitif. Une méthode de référence candidate ciblant T-tau dans le LCR a été récemment validée par le LNE en exploitant le potentiel de la dilution isotopique couplée à la spectrométrie de masse (ID LC-MS/MS) et l'utilisation d'un étalon primaire protéique traçable au Système International (SI). Une étude a été menée pour évaluer la faisabilité du développement d'une quantification traçable au SI de la protéoforme particulière de tau portant une phosphorylation sur la thréonine 181 (P-tau181). Dans le cadre d’un projet financé par l’association « France Alzheimer et maladies apparentés », le LNE et le CHU de Montpellier (Prof Hirtz et Prof Lehmann) ont développé des méthodes d’analyse permettant le profilage d’un panel de formes phosphorylées.
Ces différents travaux ont mené le LNE a coordonner le projet Européen NEuroBioStand, qui a pour ambition de développer des méthodes de référence pour le dosage de pTau, NfL et GFAP dans le sang ainsi que des approches pour la caractérisation structurale de Tau. Le travail du LNE se concentre sur P-tau, qui est désormais considéré un biomarqueur clé pour établir un diagnostic précoce de la maladie d’Alzheimer plusieurs années avant que les premiers symptômes de la maladie n’apparaissent. L'utilisation de tests sanguins non invasifs réduira le recours à l'imagerie pour les dépistages à grande échelle, limitant ainsi les coûts pour le système de santé.
Hormones stéroïdiennes et métrologie : pour une mesure fiable à très faible concentration dans des matrices biologiques
Les hormones stéroïdiennes sont des biomarqueurs sanguins utilisés pour le diagnostic et le suivi thérapeutique de patients. Une légère variation de la concentration sanguine de ces hormones, de l’ordre du ng/mL voire du pg/mL, peut dans certains cas révéler le développement de certaines maladies (par exemple des tumeurs, des troubles de la reproduction, la trisomie 21 pendant la grossesse), une exposition à des perturbateurs endocriniens, ou peut entraîner des problèmes de santé majeurs. Il est donc crucial de disposer de méthodes robustes, spécifiques et exactes capable de les quantifier à ces niveaux de concentration.
Dans le cadre d’une approche ONE-HEALTH, le LNE a initié en 2018 le développement d’une méthode de quantification par chromatographie liquide couplée à la spectrométrie de masse de 23 hormones stéroïdiennes d’intérêt majeurs en santé humaine et en environnement. Un défi analytique a dû être relevé afin de quantifier l’ensemble de ces molécules dans diverses matrices complexes que sont le sérum humain ou les eaux environnementales. Les performances de la méthode développée sur les matrices biologiques n’étant pas encore au niveau d’une méthode de référence, des développements sur la préparation d’échantillon et la séparation chromatographique se sont poursuivis afin d’améliorer les limites de quantification et les incertitudes de mesures pour la quantification de la testostérone, du 17β-estradiol et de l’aldostérone dans le sérum humain.
Sepsis : des armes affûtées pour un diagnostic rapide
Priorité de l’OMS, le sepsis – réponse inflammatoire consécutive à une infection – cause chaque année près de 11 millions de décès dans le monde. Son diagnostic précoce, reposant sur une approche combinant évaluation des signes cliniques, tests bactériologiques et dosage de biomarqueurs sanguins, est essentiel à la survie des patients, mais représente toujours un défi pour les cliniciens. En 2016, le laboratoire a initié des travaux de recherche visant l’amélioration de ce diagnostic, notamment en s’intéressant au développement d’un système de référence pour la mesure de la protéine procalcitonine, l’un des biomarqueurs couramment utilisés en clinique pour le diagnostic du sepsis et la gestion du traitement antibiotique en cas d’inflammation bactérienne. Le LNE a œuvré afin de combler les besoins liés au dosage de la procalcitonin, dont les résultats de mesure n’étaient pas traçables au système international d’unités (SI) et dont la comparabilité de ces résultats pose question. Ainsi, le développement de la première méthode de référence primaire candidate pour le dosage de la procalcitonine par spectrométrie de masse dans le cadre des projets européens AntiMicroResist et SEPTIMET, a permis de proposer un cadre métrologique. Grâce à cela, des valeurs de référence pourront être assignées à des matériaux de référence certifiés, qui permettront d’évaluer à la fois la fiabilité et la comparabilité des résultats fournis par les différentes méthodes de dosage utilisé dans les laboratoires de biologie médicale. Recourir à un seul biomarqueur semble insuffisant face à l’urgence de la prise de décision des cliniciens. Face à ces enjeux, le projet européen SEPTIMET a permis de développer une méthode de dosage d’un panel de biomarqueurs du sepsis.
Le LNE a également proposé la création d’un groupe de travail IFCC (Fédération internationale de chimie clinique et de médecine de laboratoire) sur la standardisation de la procalcitonine (IFCC WG-PCT) et coordonne les différentes activités de ce groupe depuis sa création en 2018.
Diabète
Le laboratoire a développé une méthode de référence pour le dosage du glucose, qui a été utilisée pour assigner des valeurs cibles à des Matériaux de Référence Certifiés.
Le laboratoire est également un laboratoire de référence pour le dosage de l’hémoglobine glyquée HbA1c.
A travers le projet Européen COMET, il est prévu d’évaluer la commutabilité de matériaux de contrôle de qualité afin de vérifier la fiabilité des lecteurs de glycémie et des dosages conventionnels de glucose dans le sang.
Insuffisance rénale
Le laboratoire dispose d’une méthode de référence pour le dosage de la créatinine sérique, qui a été utilisée pour assigner des valeurs cibles à des Matériaux de Référence Certifiés. Le laboratoire est également impliqué dans des travaux sur la standardisation des dosages de Cystatine C et d’albumine urinaire.
Protéines : que mesurons nous exactement ?
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Le LNE coordonne le projet européen PROMET qui vise à mieux caractériser la structure des protéines
Les protéines sont des macromolécules complexes, dynamiques et hétérogènes qui remplissent des fonctions biologiques vitales dans tous les processus des cellules vivantes et sont constituées d'une séquence de plus petites molécules appelées acides aminés. En métrologie, de nombreux travaux se sont basés sur cette séquence d’acides aminés. Ainsi, le LNE a développé ses capacités à quantifier les protéines par analyses des acides aminés, c’est-à-dire en découpant la protéine pour obtenir un mélange d’acides aminés libres. Il est accrédité par le COFRAC selon les référentiels ISO 15195 et ISO 17025 pour le dosage d’acides aminés en solution ainsi que le dosage de peptides et protéines après hydrolyse en acides aminés, tout cela en mettant en œuvre la dilution isotopique et la spectrométrie de masse. Ces analyses ne permettant pas d’analyser une protéine donnée dans un mélange complexe lui-même constitué de nombreuses protéines, elles sont utilisées pour quantifier des protéines pures en vue de leur certification en tant que matériaux de référence primaire. Pour ces matériaux, il a été nécessaire que le laboratoire développe des méthodes permettant d’établir leur pureté. Ainsi, le laboratoire utilise la chromatographie liquide couplée à la spectrométrie de masse à haute résolution (LC-HRMS) afin d’identifier si d’autres protéines (impuretés) sont présentes dans l’échantillon.
Cependant, les protéines ne sont pas uniquement caractérisées par leur séquence d’acides aminés (structure primaire), mais par leur structure globale avec également le repliement dans l'espace de cette séquence (structure secondaire et tertiaire) et l'agrégation de plusieurs séquences (structure quaternaire). Ainsi il est nécessaire de pouvoir différencier les protéines au niveau de leur structure tridimensionnelle pour améliorer la mesure de la pureté des matériaux de référence primaire. De plus, la fonction biologique d’une protéine est fortement associée à sa structure et peut être affectée par des changements structurels. Ainsi, une même protéine peut donner lieu à un mélange complexe de différentes versions de la protéine, appelées protéoformes, présentant différentes fonctions biologiques. La caractérisation structurale et l’identification de la cible à mesurer, à savoir le mesurande, est donc crucial et représentent l'un des principaux défis pour ces molécules hétérogènes et dynamiques.
En métrologie, la caractérisation de la structure globale en est encore à ses débuts. Au travers du projet européen ProMET coordonné par le LNE, la communauté métrologique s’associe aux instituts de recherches académiques fortement impliqué dans la caractérisation structurale de protéine afin de
développer des méthodes exactes pour la caractérisation de l'ensemble de la structure (primaire à quaternaire),
étendre les développements métrologiques, actuellement axés sur l'analyse de la structure primaire, à la structure d'ordre supérieur,
évaluer l'impact de la structure sur les résultats des mesures effectuées en routine
fournir des outils permettant de mieux définir le(s) mesurande(s) associé(s) à une (des) protéoforme(s) spécifique(s).
Le LNE au service du développement de matériaux de références
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Grâce à ses activités de recherche, le LNE a développé des Matériaux de Référence Certifiés pour certifier la concentration de différents biomarqueurs
Le LNE dispose des moyens et des compétences pour la certification de la concentration de différents biomarqueurs dans des solution étalon et/ou des échantillons biologiques : glucose, HbA1c, créatinine, cholestérol total, triglycérides, cholestérol-HDL, cholestérol LDL, acides aminés (Alanine, Leucine, Isoleucine, Phénylalanine, Valine, Proline), peptides et protéines. Ces activités sont accréditées par le COFRAC selon les référentiels ISO 15195 et ISO 17025. Le laboratoire est également reconnu par le JCTLM (Comité mixte pour la traçabilité en médecine de laboratoire) comme laboratoire de référence.
Le laboratoire a développé des Matériaux de Référence Certifiés pour le glucose, l’HbA1c, la créatinine, le cholestérol total, les triglycérides, le cholestérol-HDL, le cholestérol LDL, l’urée et l’acide urique.
La commutabilité (capacité à mimer le comportement d'échantillons de patient) étant une propriété d'un matériau de Référence Certifié, le laboratoire a développé des compétences reconnues internationalement et offre la possibilité d'évaluer la commutabilité de matériaux d'étalonnage et de contrôle de qualité pour différents biomarqueurs, différentes matrices et différentes méthodes de dosage. Cette expertise s’appuie entre autres sur les activités réalisées dans le cadre du projet Européen COMET, qui est coordonné par le LNE.
2023-2025 : thèse de Chloé Duret « Développement de méthodes de quantification par spectrométrie de masse pour les hormones stéroïdiennes dans des matrices biologiques et environnementales » sous la direction de Valérie Pichon (ESPCI)
2024-2026 : thèse de Samy Messaoudi « Développement de méthodes de quantification par spectrométrie de masse de biomarqueurs impliqués dans les maladies neurodégénératives » réalisée sous la Direction de Joëlle Vinh (ESPCI).
Participation à des comités et groupes de travail
Coordination du réseau Européen de métrologie TraceLabMed (EMN-TLM)
Participation au Groupe de travail CCQM sur la chimie organique (CCQM-OAWG)
Participation au Groupe de travail CCQM sur l’analyse de protéines (CCQM-PAWG)
Participation au Groupe de travail JCTLM sur la promotion de la traçabilité (JCTLM WG-TEP)
Participation au Groupe de travail JCTLM sur l’implémentation de systèmes de référence (JCTLM TF-RMSI)
Participation au comité exécutif de la division scientifique de l’IFCC (IFCC SD-EC)
Participation au Groupe de travail IFCC sur la commutabilité (IFCC WG-CMT)
Participation au Groupe de travail IFCC sur la standardisation des apolipoproteines (IFCC WG-ApoMS)
Participation au Groupe de travail IFCC sur les biomarqueurs des maladies neurodégénératives (IFCC WG-BND)
Participation au Groupe de travail IFCC sur les biomarqueurs du métabolisme osseux (IFCC C-BM)
Coordination du Groupe de travail IFCC sur la standardisation des dosages de procalcitonine (IFCC WG-PCT)
Participation au Groupe de travail IFCC sur la bilirubine néonatale (IFCC WG-NB)
Participation au Comité de Section Santé Humaine du COFRAC
Participation au comité de normalisation ISO TC 212
Participation au comité de normalisation AFNOR S94C
Feasibility of Metrological Traceability Implementation Using the Joint Committee on Traceability in Laboratory Medicine Database Entries Including the Fulfillment of "Fit-for-Purpose" Maximum Allowable Measurement Uncertainty. Panteghini M, Camara JE, Delatour V, Van Uytfanghe K, Vesper HW, Zhang T. Clin Chem. 2024:hvae131. doi: 10.1093/clinchem/hvae131
Unveiling a new era with liquid chromatography coupled with mass spectrometry to enhance parathyroid hormone measurement in patients with chronic kidney disease. Cavalier E, Farré-Segura J, Lukas P, Gendebien AS, Peeters S, Massonnet P, Le Goff C, Bouquegneau A, Souberbielle JC, Delatour V, Delanaye P. Kidney Int. 2024;105(2):338-346. doi: 10.1016/j.kint.2023.09.033.
Recommendations for Setting a Criterion and Assessing Commutability of Sample Materials Used in External Quality Assessment/Proficiency Testing Schemes. Sandberg S, Fauskanger P, Johansen JV, Keller T, Budd J, Greenberg N, Rej R, Panteghini M, Delatour V, Ceriotti F, Deprez L, Camara JE, MacKenzie F, Lyle AN, van der Hagen E, Burns C, Greg Miller W; IFCC Working Group on Commutability in Metrological Traceability. Clin Chem. 2023 Nov 2;69(11):1227-1237. doi: 10.1093/clinchem/hvad135.
Harmonization and standardization of biofluid-based biomarker measurements for AT(N) classification in Alzheimer's disease. Giangrande C, Delatour V, Andreasson U, Blennow K, Gobom J, Zetterberg H. Alzheimers Dement (Amst). 2023;15(3):e12465. doi: 10.1002/dad2.12465.
Recommendations for Setting a Criterion for Assessing Commutability of Secondary Calibrator Certified Reference Materials. Miller WG, Keller T, Budd J, Johansen JV, Panteghini M, Greenberg N, Delatour V, Ceriotti F, Deprez L, Rej R, Camara JE, MacKenzie F, Lyle AN, van der Hagen E, Burns C, Fauskanger P, Sandberg S; IFCC Working Group on Commutability in Metrological Traceability. Clin Chem. 2023;69(9):966-975. doi: 10.1093/clinchem/hvad104.
Development of a candidate reference measurement procedure by ID-LC-MS/MS for total tau protein measurement in cerebrospinal fluid (CSF). Giangrande C, Vaneeckhoutte H, Boeuf A, Lalere B, Hirtz C, Lehmann S, Quaglia M, Delatour V. Clin Chem Lab Med. 2023. doi: 10.1515/cclm-2022-1250.
Commutability Assessment of Candidate Reference Materials for Lipoprotein(a) by Comparison of a MS-based Candidate Reference Measurement Procedure with Immunoassays. Dikaios I, Althaus H, Angles-Cano E, Ceglarek U, Coassin S, Cobbaert CM, Delatour V, Dieplinger B, Grimmler M, Hoofnagle AN, Kostner GM, Kronenberg F, Kuklenyik Z, Lyle AN, Prinzing U, Ruhaak LR, Scharnagl H, Vesper HW, Deprez L. Clin Chem. 2023;69(3):262-272. doi: 10.1093/clinchem/hvac203.
Development of an LC-MRM-MS-Based Candidate Reference Measurement Procedure for Standardization of Serum Apolipoprotein (a) Tests. Ruhaak LR, Romijn FPHTM, Begcevic Brkovic I, Kuklenyik Z, Dittrich J, Ceglarek U, Hoofnagle AN, Althaus H, Angles-Cano E, Coassin S, Delatour V, Deprez L, Dikaios I, Kostner GM, Kronenberg F, Lyle A, Prinzing U, Vesper HW, Cobbaert CM. Clin Chem. 2023;69(3):251-261. doi: 10.1093/clinchem/hvac204.
Candidate High-Resolution Mass Spectrometry-Based Reference Method for the Quantification of Procalcitonin in Human Serum Using a Characterized Recombinant Protein as a Primary Calibrator. Huynh HH, Delatour V, Derbez-Morin M, Liu Q, Boeuf A, Vinh J. Anal Chem. 2022;94(10):4146-4154. doi: 10.1021/acs.analchem.1c03061.
Metrological traceability and clinical traceability of laboratory results - the role of commutability in External Quality Assurance. Jones GRD, Delatour V, Badrick T. Clin Chem Lab Med. 2022;60(5):669-674. doi: 10.1515/cclm-2022-0038.
Interpreting EQA-Understanding Why Commutability of Materials Matters. Badrick T, Miller WG, Panteghini M, Delatour V, Berghall H, MacKenzie F, Jones G. Clin Chem. 2022;68(4):494-500. doi: 10.1093/clinchem/hvac002.
Optimizing Available Tools for Achieving Result Standardization: Value Added by Joint Committee on Traceability in Laboratory Medicine (JCTLM). Panteghini M, Braga F, Camara JE, Delatour V, Van Uytfanghe K, Vesper HW, Zhang T; JCTLM Task Force on Reference Measurement System Implementation. Clin Chem. 2021. doi: 10.1093/clinchem/hvab178.
Harmonization status of procalcitonin measurements: what do comparison studies and EQA schemes tell us? Huynh HH, Bœuf A, Pfannkuche J, Schuetz P, Thelen M, Nordin G, van der Hagen E, Kaiser P, Kesseler D, Badrick T, Poggi B, Tiikkainen U, Davies GJ, Kessler A, Plebani M, Vinh J, Delatour V. Clin Chem Lab Med. 2021;59(10):1610-1622. doi: 10.1515/cclm-2021-0566.
Development of an antibody-free ID-LC MS method for the quantification of procalcitonin in human serum at sub-microgram per liter level using a peptide-based calibration. Huynh HH, Bœuf A, Derbez-Morin M, Dupuy AM, Lalere B, Delatour V, Vinh J. Anal Bioanal Chem. 2021;413(19):4707-4725. doi: 10.1007/s00216-021-03361-0.
Mortality in STEMI patients without standard modifiable risk factors: a sex-disaggregated analysis of SWEDEHEART registry data. Figtree GA, Vernon ST, Hadziosmanovic N, Sundström J, Alfredsson J, Arnott C, Delatour V, Leósdóttir M, Hagström E. Lancet. 2021;397(10279):1085-1094. doi: 10.1016/S0140-6736(21)00272-5.
Evaluation of the necessity and the feasibility of the standardization of procalcitonin measurements: Activities of IFCC WG-PCT with involvement of all stakeholders. Huynh HH, Bœuf A, Vinh J, Delatour V; IFCC Working Group on Standardization of Procalcitonin assays (WG-PCT). Clin Chim Acta. 2021;515:111-121. doi: 10.1016/j.cca.2021.01.004.
Towards an SI-Traceable Reference Measurement System for Seven Serum Apolipoproteins Using Bottom-Up Quantitative Proteomics: Conceptual Approach Enabled by Cross-Disciplinary/Cross-Sector Collaboration. Cobbaert CM, Althaus H, Begcevic Brkovic I, Ceglarek U, Coassin S, Delatour V, Deprez L, Dikaios I, Dittrich J, Hoofnagle AN, Kostner GM, Kronenberg F, Kuklenyik Z, Prinzing U, Vesper HW, Zegers I, Ruhaak LR. Clin Chem. 2021;67(3):478-489. doi: 10.1093/clinchem/hvaa239.
Should LC-MS/MS Be the Reference Measurement Procedure to Determine Protein Concentrations in Human Samples? Hoofnagle AN, Cobbaert CM, Delatour V, Kelleher NL, Lowenthal MS, Shuford CM. Clin Chem. 2021;67(3):466-471. doi: 10.1093/clinchem/hvaa256.
IFCC Working Group Recommendations for Correction of Bias Caused by Noncommutability of a Certified Reference Material Used in the Calibration Hierarchy of an End-User Measurement Procedure. Miller WG, Budd J, Greenberg N, Weykamp C, Althaus H, Schimmel H, Panteghini M, Delatour V, Ceriotti F, Keller T, Hawkins D, Burns C, Rej R, Camara JE, MacKenzie F, van der Hagen E, Vesper H. Clin Chem. 2020;66(6):769-778. doi: 10.1093/clinchem/hvaa048.
Beware of Noncommutability of External Quality Assessment Materials for Hemoglobin A1c. Delatour V, Clouet-Foraison N, Jaisson S, Kaiser P, Gillery P. Clin Chem. 2020;66(2):390-391. doi: 10.1093/clinchem/hvz024.
Reference, calibration and referral laboratories - a look at current European provisions and beyond. Buchta C, Benka B, Delatour V, Faé I, Griesmacher A, Hellbert K, Huggett J, Kaiser P, Kammel M, Kessler A, Kessler HH, Müller D, Rosendahl J, Scheiblauer H, Schweiger CR, Zeichhardt H, Cobbaert CM. Clin Chem Lab Med. 2024 Oct 14. doi: 10.1515/cclm-2024-1066.
Feasibility of Metrological Traceability Implementation Using the Joint Committee on Traceability in Laboratory Medicine Database Entries Including the Fulfillment of "Fit-for-Purpose" Maximum Allowable Measurement Uncertainty. Panteghini M, Camara JE, Delatour V, Van Uytfanghe K, Vesper HW, Zhang T. Clin Chem. 2024:hvae131. doi: 10.1093/clinchem/hvae131
Bilirubin measurements in neonates: uniform neonatal treatment can only be achieved by improved standardization. Hulzebos CV, Camara JE, van Berkel M, Delatour V, Lo SF, Mailloux A, Schmidt MC, Thomas M, Mackay LG, Greaves RF; IFCC Working Group Neonatal Bilirubin. Clin Chem Lab Med. 2024;62(10):1892-1903. doi: 10.1515/cclm-2024-0620.
Unveiling a new era with liquid chromatography coupled with mass spectrometry to enhance parathyroid hormone measurement in patients with chronic kidney disease. Cavalier E, Farré-Segura J, Lukas P, Gendebien AS, Peeters S, Massonnet P, Le Goff C, Bouquegneau A, Souberbielle JC, Delatour V, Delanaye P. Kidney Int. 2024;105(2):338-346. doi: 10.1016/j.kint.2023.09.033.
2023
Recommendations for Setting a Criterion and Assessing Commutability of Sample Materials Used in External Quality Assessment/Proficiency Testing Schemes. Sandberg S, Fauskanger P, Johansen JV, Keller T, Budd J, Greenberg N, Rej R, Panteghini M, Delatour V, Ceriotti F, Deprez L, Camara JE, MacKenzie F, Lyle AN, van der Hagen E, Burns C, Greg Miller W; IFCC Working Group on Commutability in Metrological Traceability. Clin Chem. 2023 Nov 2;69(11):1227-1237. doi: 10.1093/clinchem/hvad135.
Harmonization and standardization of biofluid-based biomarker measurements for AT(N) classification in Alzheimer's disease. Giangrande C, Delatour V, Andreasson U, Blennow K, Gobom J, Zetterberg H. Alzheimers Dement (Amst). 2023;15(3):e12465. doi: 10.1002/dad2.12465.
Recommendations for Setting a Criterion for Assessing Commutability of Secondary Calibrator Certified Reference Materials. Miller WG, Keller T, Budd J, Johansen JV, Panteghini M, Greenberg N, Delatour V, Ceriotti F, Deprez L, Rej R, Camara JE, MacKenzie F, Lyle AN, van der Hagen E, Burns C, Fauskanger P, Sandberg S; IFCC Working Group on Commutability in Metrological Traceability. Clin Chem. 2023;69(9):966-975. doi: 10.1093/clinchem/hvad104.
Development of a candidate reference measurement procedure by ID-LC-MS/MS for total tau protein measurement in cerebrospinal fluid (CSF). Giangrande C, Vaneeckhoutte H, Boeuf A, Lalere B, Hirtz C, Lehmann S, Quaglia M, Delatour V. Clin Chem Lab Med. 2023. doi: 10.1515/cclm-2022-1250.
Assessing the commutability of candidate reference materials for the harmonization of neurofilament light measurements in blood. Andreasson U, Gobom J, Delatour V, Auclair G, Noam Y, Lee S, Wen J, Jeromin A, Arslan B, Maceski A, Willemse E, Zetterberg H, Kuhle J, Blennow K. Clin Chem Lab Med. 2023. doi: 10.1515/cclm-2022-1181.
Commutability Assessment of Candidate Reference Materials for Lipoprotein(a) by Comparison of a MS-based Candidate Reference Measurement Procedure with Immunoassays. Dikaios I, Althaus H, Angles-Cano E, Ceglarek U, Coassin S, Cobbaert CM, Delatour V, Dieplinger B, Grimmler M, Hoofnagle AN, Kostner GM, Kronenberg F, Kuklenyik Z, Lyle AN, Prinzing U, Ruhaak LR, Scharnagl H, Vesper HW, Deprez L. Clin Chem. 2023;69(3):262-272. doi: 10.1093/clinchem/hvac203.
Development of an LC-MRM-MS-Based Candidate Reference Measurement Procedure for Standardization of Serum Apolipoprotein (a) Tests. Ruhaak LR, Romijn FPHTM, Begcevic Brkovic I, Kuklenyik Z, Dittrich J, Ceglarek U, Hoofnagle AN, Althaus H, Angles-Cano E, Coassin S, Delatour V, Deprez L, Dikaios I, Kostner GM, Kronenberg F, Lyle A, Prinzing U, Vesper HW, Cobbaert CM. Clin Chem. 2023;69(3):251-261. doi: 10.1093/clinchem/hvac204.
Converting to an international unit system improves harmonization of results for SARS-CoV-2 quantification: Results from multiple external quality assessments. Buchta C, Kollros D, Jovanovic J, Huf W, Delatour V, Puchhammer-Stöckl E, Mayerhofer M, Müller MM, Shenoy S, Griesmacher A, Aberle SW, Görzer I, Camp JV. J Clin Virol. 2023;158:105352. doi: 10.1016/j.jcv.2022.105352.
Feedback from Euromedlab 2023 for Seniors. Baudin B, Bigot É, Bœuf A, Delatour V, Giangrande C, Gruson D, Grzych G, Le Goff C, Mailloux A, Peoc'h K, Piéroni L, Sapin V, Tabalani H, Vaubourdolle M. Ann Biol Clin (Paris). 2023 Oct 21;81(4):435-447. doi: 10.1684/abc.2023.1822.
2022
Reports of Euromedlab 2021, in 2022. Baudin B, Boeuf A, Delatour V, Desmons A, Gouget B, Gruson D, Peoc'h K, Sapin V, Vassault A, Vaubourdolle M. Ann Biol Clin. 2022;80(3):274-286. doi: 10.1684/abc.2022.1728.
Candidate High-Resolution Mass Spectrometry-Based Reference Method for the Quantification of Procalcitonin in Human Serum Using a Characterized Recombinant Protein as a Primary Calibrator. Huynh HH, Delatour V, Derbez-Morin M, Liu Q, Boeuf A, Vinh J. Anal Chem. 2022;94(10):4146-4154. doi: 10.1021/acs.analchem.1c03061.
Metrological traceability and clinical traceability of laboratory results - the role of commutability in External Quality Assurance. Jones GRD, Delatour V, Badrick T. Clin Chem Lab Med. 2022;60(5):669-674. doi: 10.1515/cclm-2022-0038.
Interpreting EQA-Understanding Why Commutability of Materials Matters. Badrick T, Miller WG, Panteghini M, Delatour V, Berghall H, MacKenzie F, Jones G. Clin Chem. 2022;68(4):494-500. doi: 10.1093/clinchem/hvac002.
PAWG Pilot Study on Quantification of SARS-CoV-2 Monoclonal Antibody-Part 1. Mi, W, Josephs, RD. Melanson JE, Dai X, Wang Y, Zhai, R, Chu Z, Fang X, Thibeault MP, Stocks BB, Meija J, Bedu M, Martos G, Westwood S, Wielgosz RI, Liu Q, Teo TL, Liu H, TanYJ, Öztuğ M, Saban E, Kinumi T, Saikusa K, Schneider RJ, Weller MG, Konthur Z, Jaeger C, Quaglia M, Mussell C, Drinkwater G, Giangrande C, Vaneeckhoutte H, Boeuf A, Delatour V, Lee JE, O'Connor G, Ohlendorf R, Henrion A, Beltrão PJ, Scapin SM, Naressi Sade YB. Metrologia 2021;59(1A), 08001. doi: 10.1088/0026-1394/59/1A/08001
2021
Optimizing Available Tools for Achieving Result Standardization: Value Added by Joint Committee on Traceability in Laboratory Medicine (JCTLM). Panteghini M, Braga F, Camara JE, Delatour V, Van Uytfanghe K, Vesper HW, Zhang T; JCTLM Task Force on Reference Measurement System Implementation. Clin Chem. 2021. doi: 10.1093/clinchem/hvab178.
Response to Letter to the Editor regarding "Development of an antibody-free ID-LC MS method for the quantification of procalcitonin in human serum at sub-microgram per liter level using a peptide-based calibration". Huynh HH, Bœuf A, Derbez-Morin M, Dupuy AM, Lalere B, Vinh J, Delatour V. Anal Bioanal Chem. 2021;413(19):4921-4922. doi: 10.1007/s00216-021-03465-7.
The versatility of external quality assessment for the surveillance of laboratory and in vitro diagnostic performance: SARS-CoV-2 viral genome detection in Austria. Buchta C, Camp JV, Jovanovic J, Chiba P, Puchhammer-Stöckl E, Mayerhofer M, Plicka H, Lercher A, Popa AM, Endler L, Bergthaler A, Huf W, Benka B, Delatour V, Müller MM, Griesmacher A, Aberle SW, Görzer I. Clin Chem Lab Med. 2021;59(10):1735-1744. doi: 10.1515/cclm-2021-0604.
Harmonization status of procalcitonin measurements: what do comparison studies and EQA schemes tell us? Huynh HH, Bœuf A, Pfannkuche J, Schuetz P, Thelen M, Nordin G, van der Hagen E, Kaiser P, Kesseler D, Badrick T, Poggi B, Tiikkainen U, Davies GJ, Kessler A, Plebani M, Vinh J, Delatour V. Clin Chem Lab Med. 2021;59(10):1610-1622. doi: 10.1515/cclm-2021-0566.
Development of an antibody-free ID-LC MS method for the quantification of procalcitonin in human serum at sub-microgram per liter level using a peptide-based calibration. Huynh HH, Bœuf A, Derbez-Morin M, Dupuy AM, Lalere B, Delatour V, Vinh J. Anal Bioanal Chem. 2021;413(19):4707-4725. doi: 10.1007/s00216-021-03361-0.
Mortality in STEMI patients without standard modifiable risk factors: a sex-disaggregated analysis of SWEDEHEART registry data. Figtree GA, Vernon ST, Hadziosmanovic N, Sundström J, Alfredsson J, Arnott C, Delatour V, Leósdóttir M, Hagström E. Lancet. 2021;397(10279):1085-1094. doi: 10.1016/S0140-6736(21)00272-5.
Evaluation of the necessity and the feasibility of the standardization of procalcitonin measurements: Activities of IFCC WG-PCT with involvement of all stakeholders. Huynh HH, Bœuf A, Vinh J, Delatour V; IFCC Working Group on Standardization of Procalcitonin assays (WG-PCT). Clin Chim Acta. 2021;515:111-121. doi: 10.1016/j.cca.2021.01.004.
The evolving role of commutability in metrological traceability. Greg Miller W, Greenberg N, Budd J, Delatour V. Clin Chim Acta. 2021;514:84-89. doi: 10.1016/j.cca.2020.12.021.
Towards an SI-Traceable Reference Measurement System for Seven Serum Apolipoproteins Using Bottom-Up Quantitative Proteomics: Conceptual Approach Enabled by Cross-Disciplinary/Cross-Sector Collaboration. Cobbaert CM, Althaus H, Begcevic Brkovic I, Ceglarek U, Coassin S, Delatour V, Deprez L, Dikaios I, Dittrich J, Hoofnagle AN, Kostner GM, Kronenberg F, Kuklenyik Z, Prinzing U, Vesper HW, Zegers I, Ruhaak LR. Clin Chem. 2021;67(3):478-489. doi: 10.1093/clinchem/hvaa239.
Should LC-MS/MS Be the Reference Measurement Procedure to Determine Protein Concentrations in Human Samples? Hoofnagle AN, Cobbaert CM, Delatour V, Kelleher NL, Lowenthal MS, Shuford CM. Clin Chem. 2021;67(3):466-471. doi: 10.1093/clinchem/hvaa256.
2020
Analytical and clinical guidelines on neonatal bilirubinemia. Mailloux A, Cortey A, Delatour V, Poupon C, Rota M, Schmitt F, Vaubourdolle M. Ann Biol Clin (Paris). 2020;78(4):383-397. doi: 10.1684/abc.2020.1571.
IFCC Working Group Recommendations for Correction of Bias Caused by Noncommutability of a Certified Reference Material Used in the Calibration Hierarchy of an End-User Measurement Procedure. Miller WG, Budd J, Greenberg N, Weykamp C, Althaus H, Schimmel H, Panteghini M, Delatour V, Ceriotti F, Keller T, Hawkins D, Burns C, Rej R, Camara JE, MacKenzie F, van der Hagen E, Vesper H. Clin Chem. 2020;66(6):769-778. doi: 10.1093/clinchem/hvaa048.
Beware of Noncommutability of External Quality Assessment Materials for Hemoglobin A1c. Delatour V, Clouet-Foraison N, Jaisson S, Kaiser P, Gillery P. Clin Chem. 2020;66(2):390-391. doi: 10.1093/clinchem/hvz024.
Characterization of Nanoparticles. Electrospray-Differential Mobility Analysis (ES-DMA). Vasilatou K, Gaie-Levrel F, Clouet-Foraison N, Delatour V. Micro and Nano Technologies 2020, Pages 97-116. doi.org/10.1016/B978-0-12-814182-3.00008-0